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第一部分 实验指导1

第一章 显微镜技术1

实验一 普通显微镜的构造及使用方法1

实验二 相差显微镜的构造及使用方法6

实验三 荧光显微镜的构造及使用方法8

实验四 透射电子显微镜的构造及使用方法10

实验五 扫描电子显微镜的构造及使用方法15

第二章 光镜标本制作技术20

实验六 石蜡切片制作与HE染色20

实验七 冰冻切片制作与NOS染色23

实验八 小肠外纵肌层整装铺片标本制作与乙酰胆碱酯酶染色25

第三章 细胞结构与成分的显示技术28

实验九 细胞中DNA和RNA的显示28

实验十 细胞中过氧化物酶的显示34

实验十一 细胞中碱性蛋白的显示36

实验十二 细胞中线粒体的活体染色39

实验十三 细胞中液泡系的活体染色41

实验十四 细胞中糖原和脂类的显示43

实验十五 细胞中溶酶体的显示（酸性磷酸酶）47

实验十六 细胞中微丝的染色及形态观察50

实验十七 微管的间接免疫荧光显示与观察54

实验十八 中间丝的间接免疫荧光显示与观察57

第四章 细胞生理60

实验十九 细胞的吞噬活动60

实验二十 细胞的运动63

实验二十一 细胞膜的通透性测定65

实验二十二 细胞膜片钳技术68

第五章 细胞培养与分析76

实验二十三 细胞的原代培养76

实验二十四 细胞的传代培养80

实验二十五 细胞的冻存与复苏82

实验二十六 培养细胞的形态观察和计数85

实验二十七 细胞显微测量技术89

实验二十八 培养细胞生长曲线的绘制和分裂指数的测定91

实验二十九 细胞集落形成实验94

实验三十 MTT对细胞生长状况的检测97

实验三十一 细胞周期的同步化实验99

实验三十二 流式细胞仪检测细胞周期101

实验三十三 骨髓间充质干细胞的培养及其体外诱导分化104

实验三十四 器官培养106

第六章 细胞成分的分离与分析109

实验三十五 差速离心法分离细胞器109

实验三十六 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质112

实验三十七 蛋白质的双向聚丙烯酰胺凝胶电泳115

实验三十八 蛋白质印迹技术121

实验三十九 免疫沉淀法123

实验四十 DNA提取及检测126

实验四十一 RNA提取及检测（Trizol法）130

第七章 细胞工程基础技术133

实验四十二 鸡血细胞的融合133

实验四十三 染色体提前凝集标本的制备136

实验四十四 单克隆抗体的制备139

实验四十五 显微注射技术（核移植）144

实验四十六 DNA转染实验（绿色荧光蛋白）146

第八章 细胞凋亡的测定155

实验四十七 凋亡细胞的荧光显微镜下形态观察155

实验四十八 凋亡细胞的电镜下形态观察158

实验四十九 凋亡细胞的琼脂糖凝胶电泳检测——DNA梯状条带160

实验五十 凋亡细胞的单细胞凝胶电泳检测162

实验五十一 凋亡细胞的原位末端标记法检测164

实验五十二 凋亡细胞的流式细胞法检测167

实验五十三 磷脂酰丝氨酸外化的流式细胞术分析168

第九章 染色体技术171

实验五十四 染色体标本制备171

实验五十五 染色体显带技术174

实验五十六 性染色质的制备180

实验五十七 姐妹染色单体交换实验183

实验五十八 染色体原位杂交技术185

第十章 分子细胞生物学技术190

实验五十九 DNA印迹技术190

实验六十 RNA印迹技术194

实验六十一 原位PCR技术197

实验六十二 荧光定量PCR技术201

实验六十三 RNA干扰技术205

实验六十四 基因芯片及其应用209

实验六十五 用GST pull-down技术检测蛋白质-蛋白质相互作用211

第二部分 习题集215

第一章 绪论215

第二章 细胞的概念与分子基础220

第三章 细胞生物学的研究方法和手段225

第四章 细胞膜与物质的跨膜运输229

第五章 细胞的内膜系统与囊泡转运234

第六章 线粒体与细胞的能量转换237

第七章 细胞骨架与细胞的运动242

第八章 细胞核247

第九章 基因信息的传递与蛋白质合成251

第十章 细胞连接与细胞黏附255

第十一章 细胞外基质及其与细胞的相互作用259

第十二章 细胞的信号转导264

第十三章 细胞分裂与细胞周期268

第十四章 生殖细胞与受精277

第十五章 细胞分化280

第十六章 细胞衰老与细胞死亡284

第十七章 干细胞和组织的维持和再生288

第十八章 细胞工程293

附录一 生物信息学在细胞生物学研究中的应用298

第一节 生物信息学概论及生物信息数据库298

第二节 核酸数据分析306

第三节 蛋白质数据分析312

附录二 医学细胞生物学基本英语词汇317

参考文献354